Serkan YILDIZ
(Dokuz Eylül Üniversitesi, Tıp Fakültesi, Nefroloji Bilim Dalı, İzmir, Türkiye)
Zahide ÇAVDAR
(Dokuz Eylül Üniversitesi, Sağlık Bilimleri Enstitüsü, Moleküler Tıp Anabilim Dalı, İzmir, Türkiye)
Gülgün OKTAY
(Dokuz Eylül Üniversitesi, Tıp Fakültesi, Tıbbi Biyokimya Anabilim Dalı, İzmir, Türkiye)
Sülen SARIOĞLU
(Dokuz Eylül Üniversitesi, Tıp Fakültesi, Patoloji Anabilim Dalı, İzmir, Türkiye)
Ensari GÜNELİ
(Dokuz Eylül Üniversitesi, Sağlık Bilimleri Enstitüsü, Laboratuvar Hayvanları Bilimi Ana Dalı, İzmir, Türkiye)
Osman YILMAZ
(Dokuz Eylül Üniversitesi, Sağlık Bilimleri Enstitüsü, Laboratuvar Hayvanları Bilimi Ana Dalı, İzmir, Türkiye)
Taner ÇAMSARI
(Dokuz Eylül Üniversitesi, Tıp Fakültesi, Nefroloji Bilim Dalı, İzmir, Türkiye)
Yıl: 2018Cilt: 27Sayı: 1ISSN: 1300-7718Sayfa Aralığı: 49 - 56Türkçe

10 0
Sıçanlarda Doksisiklinin Kimyasal Peritonite Bağlı Peritoneal Fibrozis Gelişimi Üzerine Etkisinin İncelenmesi
AMAÇ: Çalışmada; sıçanlarda kimyasal peritonite bağlı peritoneal fibrozis modelinde, doksisiklin uygulamasının periton morfolojisindeki değişiklikler, periton yıkama sıvısındaki matriks metalloproteaz (MMP) ve matriks metalloproteaz doku inhibitörü (TIMP) aktiviteleri üzerine etkilerini incelemeyi amaçladık. GEREÇ ve YÖNTEMLER: Çalışmaya alınan 21 adet sıçan her grupta yedi adet olacak şekilde üç gruba ayrıldı. Birinci gruptaki sıçanlarda klorhekzidin glukonat (CHX) ile kimyasal peritonit oluşturuldu, ikinci grupta CHX ile kimyasal peritonit oluşturulan sıçanlara intraperitoneal doksisiklin verildi, üçüncü grup ise kontrol grubu olarak kabul edildi. Çalışma sonunda sakrifiye edilen sıçanlardan periton yıkama sıvıları, parietal ve visseral periton doku örnekleri alındı. Peritoneal yıkama sıvılarında MMP-2, MMP-9, TIMP-1, TIMP-2 ve prokollajen tip I C-terminal peptid (PIPC) düzeyleri ölçümü yapıldı. Periton doku örneklerinde kalınlık ölçümü, olgunlaşmamış kollajen düzeyi ölçümü ve inflamasyon skorlaması yapıldı. BULGULAR: Parietal periton olgunlaşmamış kollajen düzeyleri, parietal-visseral periton kalınlıkları ve inflamasyon skorları açısından gruplar arasında anlamlı fark saptandı (p<0,05). Periton yıkama sıvısında ölçülen TIMP-1 ve PIPC düzeyleri açısından gruplar arasında anlamlı fark saptanırken (p<0,05), MMP-2 ve TIMP-2 düzeyleri açısından gruplar arasında anlamlı fark saptanmadı (p>0,05). SONUÇ: Bu deneysel çalışmada, CHX solüsyonu periton dokusunda kimyasal hasarlanmaya yol açmıştır. İstatistiksel olarak anlamlı olmasa da doksisiklin uygulaması CHX solüsyonunun periton dokusunda yapmış olduğu hasarlanmayı azaltmıştır.
Fen > Tıp > Genel ve Dahili Tıp
DergiAraştırma MakalesiErişime Açık
  • 1. Flessner MF: Peritoneal transport physiology: Insights from basic research. J Am Soc Nephrol 1991;2:122-135
  • 2. Dobbie JW: Durability of the peritoneal membrane. Perit Dial Int 1995;15:87-92
  • 3. Dobbie JW: Pathogenesis of peritoneal fibrosing syndromes (sclerosing peritonitis) in peritoneal dialysis. Perit Dial Int 1992;12:14-27
  • 4. Fukudome K, Fujimoto S, Sato Y, Hisanaga S, Eto T: Peritonitis increases MMP-9 activity in peritoneal effluent from CAPD patients. Nephron 2001;87:35-41
  • 5. Bode W, Maskos K: Structural basis of the matrix metalloproteinases and their physiological inhibitors, the tissue inhibitors of metalloproteinases. Biol Chem 2003;384:863-872
  • 6. Kossakowska AE, Edwards DR, Lee SS, Urbanski LS, Stabbler AL, Zhang CL, Phillips BW, Zhang Y, Urbanski SJ: Altered balance between matrix metalloproteinases and their inhibitors in experimental biliary fibrosis. Am J Pathol 1998;153:1895-1902
  • 7. Martin J, Yung S, Robson RL, Steadman R, Davies M: Production and regulation of matrix metalloproteinases and their inhibitors by human peritoneal mesothelial cells. Perit Dial Int 2000;20:524-533
  • 8. Hanemaaijer R, Visser H, Koolwijk P, Sorsa T, Salo T, Golub LM, van Hinsbergh VW: Inhibition of MMP synthesis by doxycycline and chemically modified tetracyclines (CMTs) in human endothelial cells. Adv Dent Res 1998;12:114-118
  • 9. Lalu MM, Gao CQ, Schulz R: Matrix metalloproteinase inhibitors attenuate endotoxemia induced cardiac dysfunction: A potential role for MMP-9. Mol Cell Biochem 2003;251:61-66
  • 10. Clark JD, Gebhart GF, Gonder JC, Keeling ME, Kohn DF: Special Report: The 1996 Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. ILAR J 1997;38:41-48
  • 11. Hirahara I, Ogawa Y, Kusano E, Asano Y: Activation of matrix metalloproteinase-2 causes peritoneal injury during peritoneal dialysis in rats. Nephrol Dial Transplant 2004;19:1732-1741
  • 12. Lalu MM, Gao CQ, Schulz R: Matrix metalloproteinase inhibitors attenuate endotoxemia induced cardiac dysfunction: A potential role for MMP-9. Mol Cell Biochem 2003;251:61-66
  • 13. Ghiselli R, Giacometti A, Cirioni O, Mocchegiani F, Orlando F, Del Prete M, D’Amato G, Scalise G, Saba V: Quinupristin/dalfopristin bonding in combination with intraperitoneal antibiotics prevent infection of knitted polyester graft material in a subcutaneous rat pouch model infected with resistant Staphylococcus epidermidis. Eur J Vasc Endovasc Surg 2002;24:230-234
  • 14. Wu CM, Lin MW, Cheng JT, Wang YM, Huang YW, Sun WZ, Lin CR: Regulated, electroporation-mediated delivery of proopiomelanocortin gene suppresses chronic constriction injuryinduced neuropathic pain in rats. Gene Ther 2004;11:933-940
  • 15. Francis RJ: Amyloid. In: Bancroft JD, Stevens A (eds). Theory and Practice of Histological Techniques. Edinburgh: Churchill Livingstone, 1990;155-175
  • 16. Kleiner DE, Stetler-Stevenson WG: Quantitative zymography: Detection of picogram quantities of gelatinases. Anal Biochem 1994;218:325-329
  • 17. Cirak MY: Enzyme Linked Immunosorbent Assay (ELISA) Systems. Turkiye Klinikleri J Med Sci 1999;19:242-248
  • 18. Henderson IS, Dobbie JW, Zaki MA, Wilson LS: Structure of the peritoneum and changes brought about by infection. Contrib Nephrol 1987;57:30-40
  • 19. Villarreal FJ, Griffin M, Omens J, Dillmann W, Nguyen J, Covell J: Early short-term treatment with doxycycline modulates postinfarction left ventricular remodeling. Circulation 2003;108:1487-1492
  • 20. Roach DM, Fitridge RA, Laws PE, Roach DM, Fitridge RA, Laws PE, Millard SH, Varelias A, Cowled PA: Up-regulation of MMP-2 and MMP-9 leads to degradation of type IV collagen during skeletal muscle reperfusion injury; protection by the MMP inhibitor, doxycycline. Eur J Vasc Endovasc Surg 2002;23:260-269
  • 21. Lalu MM, Gao CQ, Schulz R: Matrix metalloproteinase inhibitors attenuate endotoxemia induced cardiac dysfunction: A potential role for MMP-9. Mol Cell Biochem 2003;251:61-66
  • 22. Bezerra MM, Brito GA, Ribeiro RA, Rocha FA: Low-dose doxycycline prevents inflammatory bone resorption in rats. Braz J Med Biol Res 2002;35:613-616
  • 23. Hirahara I, Umeyama K, Urakami K, Kusano E, Masunaga Y, Asano Y: Serial analysis of matrix metalloproteinase-2 in dialysate of rat sclerosing peritonitis models. Clin Exp Nephrol 2001;5:103- 108
  • 24. Hirahara I, Umeyama K, Shofuda K, Kusano E, Masunaga Y, Honma S, Asano Y: Increase of matrix metalloproteinase-2 in dialysate of rat sclerosing encapsulating peritonitis model. Nephrology 2002;7:161-169
  • 25. Ha H, Cha MK, Choi HN, Lee HB: Effects of peritoneal dialysis solutions on the secretion of growth factors and extracellular matrix proteins by human peritoneal mesothelial cells. Perit Dial Int 2002;22:171-177
  • 26. Nagaoka I, Hirota S: Increased expression of matrix metalloproteinase-9 in neutrophils in glycogen-induced peritoneal inflammation of guinea pigs. Inflamm Res 2000;49:55-62
  • 27.John A, Tuszynski G: The role of matrix metalloproteinases in tumor angiogenesis and tumor metastasis. Pathol Oncol Res 2001;7:14-23
  • 28. Zaoui P, Cantin JF, Alimardani-Bessette M, Monier F, Halimi S, Morel F, Cordonnier D: Role of metalloproteases and inhibitors in the occurrence and progression of diabetic renal lesions. Diabetes Metab 2000;26 Suppl 4:25-29
  • 29.Jayasankar V, Woo YJ, Bish LT, Pirolli TJ, Berry MF, Burdick J, Bhalla RC, Sharma RV, Gardner TJ, Sweeney HL: Inhibition of matrix metalloproteinase activity by TIMP-1 gene transfer effectively treats ischemic cardiomyopathy. Circulation 2004;110:180-186
  • 30. Saglam F, Cavdar Z, Sarioglu S, Kolatan E, Oktay G, Yilmaz O, Camsari T: Pioglitazone reduces peritoneal fibrosis via inhibition of TGF-β, MMP-2, and MMP-9 in a model of encapsulating peritoneal sclerosis. Ren Fail 2012; 34:95-102
  • 31. Liu J, Zeng L, Zhao Y, Zhu B, Ren W, Wu C: Selenium suppresses lipopolysaccharide-induced fibrosis in peritoneal mesothelial cells through inhibition of epithelial-to-mesenchymal transition. Biol Trace Elem Res 2014;161:202-209
  • 32. Zhang H, Li D, Li Z, Song Y: Effect of Ligustrazine on rat peritoneal mesothelial cells treated with lipopolysaccharide. Ren Fail 2016;38:961-969

TÜBİTAK ULAKBİM Ulusal Akademik Ağ ve Bilgi Merkezi Cahit Arf Bilgi Merkezi © 2019 Tüm Hakları Saklıdır.