Yıl: 2020 Cilt: 13 Sayı: 2 Sayfa Aralığı: 149 - 156 Metin Dili: Türkçe DOI: 10.47027/duvetfd.815371 İndeks Tarihi: 23-06-2021

Tavşanlarda Tarantula Cubensis Ekstraktı ve Düşük Enerjili Lazer Uygulanan Deneysel Kemik Defektlerinin İyilesmesinde Osteonektin ve Ostekalsinin Etkilerinin Araştırılması

Öz:
Kemik dokunun yeniden şekillenmesi, döngüsel ve uzun bir süreç olarak tanımlanır. Bu dinamiklerin sadece biyolojik bir süreç tarafındantetiklenmediği, aynı zamanda biyokimyasal, elektriksel ve mekanik uyaranların kemik dokusunun devamlılığının sağlanmasında anahtarfaktörler olduğu kabul edilmektedir. Bu çalışmada, Düşük Enerjili Lazer (DEL) ve T. Cubensis Ekstraktı (TCE) uygulamalarının kemikonarımını destekleyebileceği hipotezinden yola çıkarak, kemik iyileşmesi ve mineralizasyonun belirteçlerinden olan Osteokalsin (OC) veOsteonektin (ON) ekspresyon yoğunlukları üzerindeki etkilerinin ortaya koyulması amaçlandı. Çalışmada Dicle Üniversitesi DeneyHayvanları Ünitesinden temin edilen toplam 54 adet 6-8 aylık Yeni Zelanda ırkı erkek tavşan (2.5-3 kg) kullanıldı. Tavşanlar operasyonsonrası her bir grupta 18 adet olacak şekilde 3 ana uygulama grubuna ayrıldı. Operasyon sonrası DEL ve TCE kemik defekti oluşturulanbölgeye uygulandı. Tavşanlarda defekt oluşturulan kemik dokudan elde edilen kesitlerde OC ve ON’nin defekt bölgesindekilokalizasyonlarını ve ekpresyonlarını belirlemek için immunohistokimyasal yöntem uygulandı. Kortikal ve spongiyöz kemiklerde sekonderkemik oluşumuna paralel olarak OC ve ON ekspresyonlarının değişkenlik gösterdiği belirlendi. OC ekspresyonunun DEL ve TCE gruplarında,kontrol grubuna göre daha yüksek olduğu saptandı. Kontrol grubunda 7, 21 ve 28 günlerde ON ekspresyonlarının nispeten zayıf ve benzerolduğu, buna karşın DEL ve TCE gruplarında uygulamaların 7. ve 21. günlerde ON ekspresyonun nispeten zayıf, 28. günde ise ONekspresyonun yüksek olduğu dikkati çekti. Sonuç olarak, tavşan kemik defekti modelinde düşük enerjili lazer ve t. cubensis uygulamalarınınkemik iyileşmesi sırasında OC ve ON ekspresyonlarını artırdığı ve uygulama günlerine göre OC ve ON ekspresyonlarındaki kademeli artışınerken kemik iyileşmesinin desteklenmesinde önemli potansiyellere sahip olabileceğini göstermiştir.
Anahtar Kelime:

Investigation of the Effects of Osteonectin and Ostecalcin on the Healing of Experimental Bone Defects Applied with Tarantula Cubensis Extract and Low Level Energy Laser in Rabbits

Öz:
The remodeling of bone tissue is characterized as a cyclic and lengthy process. It is accepted that these dynamics are not triggered by a biological process, but also that biochemical, electrical and mechanical stimuli are key factors in maintaining the continuity of bone tissue. In this study, we aimed to demonstrate the effects of low-level laser (DEL) and T. cubensis extract (TCE) applications on the expression intensities of Osteocalcin (OC) and Osteonectin (ON), which are markers of bone healing and mineralization, based on the hypothesis that they can support bone repair. A total of 54 6-8-month-old male rabbits (2.5-3 kg) obtained from Dicle University Experimental Animal Unit were used in the study. The rabbits were divided into 3 main treatment groups, 18 in each group after the operation. After the operation, DEL and TCE were applied to the area where the bone defect was created. An immunohistochemically method was applied to determine the localizations and expressions of OC and ON in the defect area in the sections obtained from the defected bone tissue in rabbits. It was determined that OC and ON expressions varied in parallel with secondary bone formation in cortical and cancellous bones. OC expression was found to be higher in DEL and TCE groups than control group. It was noticed that ON expressions were relatively weak and similar on days 7, 21 and 28 in the control group, whereas in DEL and TCE groups, ON expression was relatively weak on the 7th and 21st days and ON expression was high on the 28th day. In conclusion, it has been shown that low level laser and T. Cubensis application increase OC and ON expressions during bone healing in the rabbit bone defect model and gradual increase in OC and ON expressions according to the application days may have important potentials in supporting early bone healing.
Anahtar Kelime:

Belge Türü: Makale Makale Türü: Araştırma Makalesi Erişim Türü: Erişime Açık
  • 1. Czekanska EM, Stoddart MJ, Richards RG, Hayes JS. (2012). In Search of an Osteoblast Cell Model for in Vitro Research. Eur Cell Mater. 9(24): 1-17.
  • 2. Irie K, Alpaslan C, Takahashi K, et al. (2003). Osteoclast Differentiation in Ectopic Bone Formation Induced by Recombinant Human Bone Morphogenetic Protein 2 (rhBMP-2). J Bone Miner. 21(6): 363-369.
  • 3. Çılbır Ö, Karaca İ, Sabuncuoğlu B, Akbay C. (1999). Demineralize Kemik Tozunun Kemik İyileşmesi Üzerindeki Etkilerinin Deneysel Olarak İncelenmesi. CÜ Diş Hekimliği Fak Derg. 2 (2): 117- 121.
  • 4. Bernard GW. (1991). Healing and Repair of Osseous Defects. Dent Clin North Am. 35 (3): 469-477.
  • 5. Block MS, Kent JN, Ardoin RC, Davenport W. (1987). Mandibular Augmentation in Dogs with Hydroxylapatite Combined with Demineralized Bone. J Oral Maxillofac Surg. 45 (5): 414-420.
  • 6. Chesmel KD, Branger J, Wertheım H, Scarborough N. (1998). Healing Response to Various Forms of Human Demineralized Bone Matrix in Athymic Rat Cranial Defects. J Oral Maxiliofac Surg. 56 (7): 857-863.
  • 7. Constantino PD, Friedman CD. (1994). Soft Tissue Augmentation and Replacement in the Head and Neck. Otolaryngol Clin North Am 27(1): 1-12.
  • 8. AboElsaad NS, Soory M, Gadalla LM, et al. (2009). Effect of Soft Laser and Bioactive Glass on Bone Regeneration in the Treatment of Bone Defects (An Experimental Study). Lasers Med Sci. 24(4): 527-533.
  • 9. Obradovic RR, Kesic LG, Pesevska S. (2009). Influence of LowLevel Laser Therapy on Biomaterial Osseointegration: A MiniReview. Lasers Med Sci. 24(3): 447-451.
  • 10. Batista JD, Sargenti-Neto S, Dechichi P, Rocha FS, Pagnoncelli RM. (2015). Low-level Laser Therapy on Bone Repair: Is There Any Effect Outside the Irradiated Field? Lasers Med Sci. 30:1569–1574.
  • 11. Pretel H, Lizarelli RFZ, Ramalho LTO. (2007). Effect of Low-Level Laser Therapy on Bone Repair: Histological Study in Rats. Lasers Surg Med. 39: 788–796.
  • 12. Bossini PS, Rennó ACM, Ribeiro DA, Fangel R, Ribeiro AC, de Assis Lahoz M, Parizotto NA. (2012). Low Level Laser Therapy (830 nm) Improves Bone Repair in Osteoporotic Rats: Similar Outcomes at Two Different Dosages. Exp Gerontol. 47: 136–142.
  • 13. Garavello-Freitas I, Baranauskas V, Joazeiro PP, Padovani CR, Dal Pai-Silva M, da Cruz-Hofling MA. (2003). Low-Power Laser Irradiation Improves Histomorphometrical Parameters and Bone Matrix Organization during Tibia Wound Healing in Rats. J Photochem Photobiol B. 70 (2): 81-89.
  • 14. Lirani-Galvao AP, Jorgetti V, da Silva OL. (2006). Comparative Study of How Low-Level Laser Therapy and Low-Intensity Pulsed Ultrasound Affect Bone Repair in Rats. Photomed Laser Surg. 24 (6): 735-740.
  • 15. Cerqueira A, Silveira RL, Oliveira MG, Sant’ana Filho M, Heitz C. (2007). Bone Tissue Microscopic Findings Related to the use of Diode Laser (830 Nm) in Ovine Mandible Submitted to Distraction Osteogenesis. Acta Cir Bras. 22 (2): 92-97.
  • 16. Blaya DS, Guimaraes MB, Pozza DH, Weber JB, de Oliveira MG. (2008). Histologic Study of the Effect of Laser Therapy on Bone Repair. J Contemp Dent Pract. 9 (6): 41-48.
  • 17. Kızıl Ö, Atam S. (2016). Homeopati ve Veteriner Hekimlikte Homeopatik Tedavi Uygulamaları. FÜ Sağ Bil Vet Derg. 30 (3): 243– 246.
  • 18. Özyurtlu N, Alaçam E. (2005). Effectiveness of Homeopathy for the Treatment of Pseudopregnancy in Bitches. Turk J Vet Anim Sci. 29: 903-907.
  • 19- Kaya S. (2007). Homeopati ve Tıbbi Bitkiler. Veteriner Farmakoloji, 4. Baskı, Ankara: Medisan.
  • 20. Duval J. (2012). “Treating mastitis without antibiotics. AGROBIO-370-11E, Ecological Agriculture Projects”. http://eap.mcgill.ca/agrobio/ab370-11e.htm/ 25.12.2012.
  • 21. Bigham–Sadegh A, Karimi I, Hoseini F, Moradi H. (2017). Concurrent Use of Theranekron with Hydroxyapatite on Bone Healing in Rabbit Model: Radiographic and Histologic Evaluation. Iranian J Ortho Surg 15 (2): 56-64.
  • 22. Sharifi S, Bigham-Sadegh A, Oryan A, Alavi Y. (2020). The Effect of Theranekron and Autograft Bone on Bone Defect Healing in Rabbit Model. Preprint from Research Square DOI: 10.21203/rs.2.18822/v2 PPR: PPR121344.
  • 23. Kızılay Z, Aktaş S, Kahraman Çetin N, Kılıç MA, Oztürk H. (2019). Effect of Tarantula Cubensis Extract (Theranekron) on Peripheral Nerve Healing in an Experimental Sciatic Nerve Injury Model in Rats. Turk Neurosurg. 29 (5): 743-749.
  • 24. Bigham-Sadegh A, Oryan A. (2015). Selection of Animal Models for Pre-Clinical Strategies in Evaluating the Fracture Healing, Bone Graft Substitutes and Bone Tissue Regeneration and Engineering. Connect Tissue Res. 56(3): 175–194.
  • 25. Özdemir B, Kurtiş B, Tüter G, Şengüven B, Yıldırım B, Özcan G. (2016). Osteocalcin and Osteonectin Expression after Double Application of Platelet-Rich Plasma in Rabbits. J Istanbul Univ Fac Dent. 50 (2): 1-9.
  • 26. Verbicaro T, Giovanini AF, Zielak JC, Filho FB, de Araujo MR, Deliberador TM. (2013). Osteocalcin Immunohistochemical Expression During Repair of Critical- Sized Bone Defects Treated with Subcutaneous Adipose Tissue in Rat and Rabbit Animal Model. Braz Dent J. 4 (6): 559-564.
  • 27. Ishigaki R, Takagi M, Igarashi M, Ito K. (2002). Gene Expression and Immunohistochemical Localization of Osteonectin in Association with Early Bone Formation in the Developing Mandible. Histochem J. 34: 57–66.
  • 28. Ribeiro TP, Nascimento SB, Cardoso CA, Hage R, Almeida JD, Arisawa EAL. (2012). Low-Level Laser Therapy and Calcitonin in Bone Repair: Densitometric Analysis. Int J Photoenergy. Article ID 829587, 1-5.
  • 29. Pearce AI, Richards RG, Milz S, Schneider E, Pearce SG. (2007). Animal Models for Implant Biomaterial Research in Bone: A Review. Eur Cell Mater. DOI: 10.22203/eCM.v013a01.
  • 30. Ajayi IE, Shawulu JC, Zachariya TS, Ahmed S, Adah BM. (2012). Osteomorphometry of the Bones of the Thigh, Crus and Foot in the New Zealand White Rabbit (Oryctolagus Cuniculus). Italy J Anat Embryol. 117: 125-134.
  • 31. Shakouri SK, Soleimanpour J, Salekzamani Y, Oskuie MR. (2010). Effect of Low-Level Laser Therapy on the Fracture Healing Process. Lasers Med Sci. 25: 73–77.
  • 32. Oryan A, Moshiri A, Meimandi-Parizi AA. (2012). Alcoholic Extract of Tarantula Cubensis İmproves Sharp Ruptured Tendon Healing after Primary Repair in Rabbits. Am J Orthop. 41: 554– 560.
  • 33. Mota FC, Belo MA, Beletti ME, Okubo R, Prado EJ, Casale RV. (2013). Low-power Laser Therapy for Repairing Acute and Chronic-Phase Bone Lesions. Res Vet Sci. 94: 105–110.
  • 34. Dahlin C, Linde A, Gottlow J, Nyman S. (1988). Healing of Bone Defects by Guided Tissue Regeneration. Plast Reconstr Surg. 81(5): 672–676.
  • 35. Markel MD, Wikenheiser MA, Chao EY. (1991). Formation of Bone in Tibial Defects in A Canine Model. Histomorphometric and Biomechanical Studies. J Bone Joint Surg Am. 73 (6): 914– 923.
  • 36. Takeda Y. (1988). Irradiation Effect of Low-Energy Laser on Alveolar Bone after Tooth Extraction. Experimental Study in Rats. Int J Oral Maxillofac Surg. 17 (6): 388–391.
  • 37. Bortoletto R, Silva NS, Zangaro RA, Pacheco MT, Da Matta RA, Pacheco-Soares C. (2004). Mitochondrial Membrane Potential after Low-Power Laser Irradiation. Lasers Med Sci. 18 (4): 204– 206.
  • 38. Sella VRG, do Bomfim FRC, Machado PCD, da Silva Morsoleto MJM, Chohfi M, Plapler H. (2015). Effect of Low-Level Laser Therapy on Bone Repair: A Randomized Controlled Experimental Study. Lasers Med Sci. 30: 1061–1068.
  • 39. Gul Satar NY, Cangul IT, Topal A, Kurt H, Ipek V, Onel GI. (2017). The effects of Tarantula Cubensis Venom on Open Wound Healing in rats. J Wound Care. 26 (2): 66-71.
  • 40. Gultekin N, Guvenc T, Kaya D, et al. (2015). Tarantula Cubensis Extract Alters the Degree of Apoptosis and Mitosis in Canine Mammary Adenocarcinomas. J Vet Sci. 16 (2): 213- 219.
  • 41. Thurner PJ, Chen CG, et al. (2010). Osteopontin Deficiency Increases Bone Fragility but Preserves Bone Mass. Bone. 46: 1564–1573.
  • 42. Irie K, Zalzal S, Ozawa H, McKee MD, Nanci A. (1998). Morphological and Immunocytochemical Characterization of Primary Osteogenic Cell Cultures Derived from Fetal Rat Cranial Tissue. Anat Rec. 252 (4): 554–567.
APA Altan S, sağsöz h (2020). Tavşanlarda Tarantula Cubensis Ekstraktı ve Düşük Enerjili Lazer Uygulanan Deneysel Kemik Defektlerinin İyilesmesinde Osteonektin ve Ostekalsinin Etkilerinin Araştırılması. , 149 - 156. 10.47027/duvetfd.815371
Chicago Altan Semih,sağsöz hakan Tavşanlarda Tarantula Cubensis Ekstraktı ve Düşük Enerjili Lazer Uygulanan Deneysel Kemik Defektlerinin İyilesmesinde Osteonektin ve Ostekalsinin Etkilerinin Araştırılması. (2020): 149 - 156. 10.47027/duvetfd.815371
MLA Altan Semih,sağsöz hakan Tavşanlarda Tarantula Cubensis Ekstraktı ve Düşük Enerjili Lazer Uygulanan Deneysel Kemik Defektlerinin İyilesmesinde Osteonektin ve Ostekalsinin Etkilerinin Araştırılması. , 2020, ss.149 - 156. 10.47027/duvetfd.815371
AMA Altan S,sağsöz h Tavşanlarda Tarantula Cubensis Ekstraktı ve Düşük Enerjili Lazer Uygulanan Deneysel Kemik Defektlerinin İyilesmesinde Osteonektin ve Ostekalsinin Etkilerinin Araştırılması. . 2020; 149 - 156. 10.47027/duvetfd.815371
Vancouver Altan S,sağsöz h Tavşanlarda Tarantula Cubensis Ekstraktı ve Düşük Enerjili Lazer Uygulanan Deneysel Kemik Defektlerinin İyilesmesinde Osteonektin ve Ostekalsinin Etkilerinin Araştırılması. . 2020; 149 - 156. 10.47027/duvetfd.815371
IEEE Altan S,sağsöz h "Tavşanlarda Tarantula Cubensis Ekstraktı ve Düşük Enerjili Lazer Uygulanan Deneysel Kemik Defektlerinin İyilesmesinde Osteonektin ve Ostekalsinin Etkilerinin Araştırılması." , ss.149 - 156, 2020. 10.47027/duvetfd.815371
ISNAD Altan, Semih - sağsöz, hakan. "Tavşanlarda Tarantula Cubensis Ekstraktı ve Düşük Enerjili Lazer Uygulanan Deneysel Kemik Defektlerinin İyilesmesinde Osteonektin ve Ostekalsinin Etkilerinin Araştırılması". (2020), 149-156. https://doi.org/10.47027/duvetfd.815371
APA Altan S, sağsöz h (2020). Tavşanlarda Tarantula Cubensis Ekstraktı ve Düşük Enerjili Lazer Uygulanan Deneysel Kemik Defektlerinin İyilesmesinde Osteonektin ve Ostekalsinin Etkilerinin Araştırılması. Dicle Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, 13(2), 149 - 156. 10.47027/duvetfd.815371
Chicago Altan Semih,sağsöz hakan Tavşanlarda Tarantula Cubensis Ekstraktı ve Düşük Enerjili Lazer Uygulanan Deneysel Kemik Defektlerinin İyilesmesinde Osteonektin ve Ostekalsinin Etkilerinin Araştırılması. Dicle Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi 13, no.2 (2020): 149 - 156. 10.47027/duvetfd.815371
MLA Altan Semih,sağsöz hakan Tavşanlarda Tarantula Cubensis Ekstraktı ve Düşük Enerjili Lazer Uygulanan Deneysel Kemik Defektlerinin İyilesmesinde Osteonektin ve Ostekalsinin Etkilerinin Araştırılması. Dicle Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, vol.13, no.2, 2020, ss.149 - 156. 10.47027/duvetfd.815371
AMA Altan S,sağsöz h Tavşanlarda Tarantula Cubensis Ekstraktı ve Düşük Enerjili Lazer Uygulanan Deneysel Kemik Defektlerinin İyilesmesinde Osteonektin ve Ostekalsinin Etkilerinin Araştırılması. Dicle Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi. 2020; 13(2): 149 - 156. 10.47027/duvetfd.815371
Vancouver Altan S,sağsöz h Tavşanlarda Tarantula Cubensis Ekstraktı ve Düşük Enerjili Lazer Uygulanan Deneysel Kemik Defektlerinin İyilesmesinde Osteonektin ve Ostekalsinin Etkilerinin Araştırılması. Dicle Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi. 2020; 13(2): 149 - 156. 10.47027/duvetfd.815371
IEEE Altan S,sağsöz h "Tavşanlarda Tarantula Cubensis Ekstraktı ve Düşük Enerjili Lazer Uygulanan Deneysel Kemik Defektlerinin İyilesmesinde Osteonektin ve Ostekalsinin Etkilerinin Araştırılması." Dicle Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi, 13, ss.149 - 156, 2020. 10.47027/duvetfd.815371
ISNAD Altan, Semih - sağsöz, hakan. "Tavşanlarda Tarantula Cubensis Ekstraktı ve Düşük Enerjili Lazer Uygulanan Deneysel Kemik Defektlerinin İyilesmesinde Osteonektin ve Ostekalsinin Etkilerinin Araştırılması". Dicle Üniversitesi Veteriner Fakültesi Dergisi 13/2 (2020), 149-156. https://doi.org/10.47027/duvetfd.815371