Balda Hile Tespitinde İzotopik Analiz Uygulamaları

Türkmen Özen, İlkay

Balda Hile Tespitinde İzotopik Analiz Uygulamaları

İlkay TÜRKMEN ÖZEN (Gümüşhane Üniversitesi, Mühendislik ve Doğa Bilimleri Fakültesi, Gıda Mühendisliği Bölümü, Gümüşhane, Türkiye)

Osmaniye Korkut Ata Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü Dergisi (Online)

5 0

Yıl: 2020 Cilt: 3 Sayı: 2 Sayfa Aralığı: 207 - 212 Metin Dili: Türkçe İndeks Tarihi: 29-07-2022

Balda Hile Tespitinde İzotopik Analiz Uygulamaları

Öz:

İzotopik analiz uygulamalarının temeli karbon, hidrojen ve oksijen atomlarınınizotop oranlarının tespitine dayanır. Bitkilerde izotop atom dağılımının tespitindeyararlanılan en önemli faktör bitkinin hangi fotosentez sistemine dahil olduğu ileilgilidir. Fotosentez sistemi sınıflandırmasına göre bitkiler C3, C4 ve CAMbitkileri olarak gruplandırılmaktadır. Bitkilerin karbon metabolizmalarınınbelirlenmesinde δ13C (13C/12C ) değeri standart değer olarak kabul edilir. δ13Cdeğerleri C3, C4 ve CAM bitkileri arasında farklılık gösterir ve bu farklılıktan yolaçıkarak bir gıdanın gerçekliği/otantikliği veya bir gıdaya başka bir gruptan gıda yada bileşen katılıp katılmadığı tespit edilebilmektedir. Bal da izotopik analizuygulamaları ile gerçekliği belirlenebilen gıdalardan biridir. Arılar bal üretimindeçoğunlukla C3 fotosentez sistemine dahil olan bitkilerin özlerini kullanmaktadır.Hileli bal yapımında ise şeker kamışı ve mısır gibi C4 fotosentez sisteminikullanan bitkiler kullanılmaktadır. Şeker pancarı şekeri ilavesi ile yapılan sahtebalların belirlenmesinde baldan protein ekstrakte edilir ve δ13C değeri belirlenerekbu değer hakiki balın δ13C değeri ile karşılaştırılır. Kabul edilen uluslararası limitegöre, karşılaştırılan balların δ13C değerleri arasındaki fark ‰1’den farklıolmamalıdır. Bu derleme makalesinde izotopik analizler hakkında bilgi verilerekbu yöntemlerin baldaki uygulamaları ile hileli ve gerçek balın tespiti üzerinekatkısının açıklanması amaçlanmıştır.

Anahtar Kelime: bal otantiklik izotopik analiz 13C/12C IRMS C3 şeker

Isotopic Analysis Applications in Honey Adulteration Detection

Öz:

The basis of isotopic analysis applications is based on the determination of the isotope ratios of carbon, hydrogen and oxygen atoms. The most important factor used in determining the isotope atom distribution in plants is related to which photosynthesis system the plant is involved in. Plants are grouped as C3, C4 and CAM plants according to the photosynthesis system classification. δ 13C ( 13C / 12C) value is accepted as a standard in determining the carbon metabolism of plants. There is a difference between the δ13C values of C3, C4 and CAM plants. Utilizing this distinction, addition a food or food component from another group participates in a food, or the authenticity of food can be determined. Honey is one of the foods whose authenticity can be determined by isotopic analysis applications. Honey bees usually use C3 plant extracts in honey production. In the production of adulterated honey, C4 plants such as sugarcane and corn are used. Detection of adulterated honey which made with sugar beet sugar added, protein extracted from the honey to detect δ13C value and this value is compared with the value of pure honey δ13C. According to the accepted international limit, the difference between the δ 13C values of the compared honeys should not differ from ‰ 1. In this review article, it is aimed to explain the application of these methods in honey and their contribution to the detection of adulturated honey by giving information about isotopic analysis.

Anahtar Kelime:

Belge Türü: Makale Makale Türü: Derleme Erişim Türü: Erişime Açık

[1] TGK, Türk Gıda Kodeksi: Bal Tebliği. Resmi Gazete, 27 Temmuz 2012-28366. Tebliğ No: 2012/58, 2012.
[2] FAO, Food and Agricultural Commodities Production., Honey. http://www.fao.org/faostat/en/#data/QL, 2017. (Erişim tarihi: 11.11.2020).
[3] Chen CT., Chen BY., Nai YS., Chang YM., Chen KH., Chen YW. Novel inspection of sugar residue and origin in honey based on the 13C/12C isotopic ratio and protein content, Journal of Food and Drug Analysis 2019; 27(1): 175-183.
[4] Crane E. A Book of Honey, Oxford University Press, Newyork, 1980.
[5] Se KW., Wahab RA., Syed Yaacob SN., Ghoshal SK. Detection techniques for adulterants in honey: Challenges and recent trends, Journal of Food Composition and Analysis 2019; 80, 16-32.
[6] Elflein L., Raezke KP. Improved detection of honey adulteration by measuring differences between 13C/12C stable carbon isotope ratios of protein and sugar compounds with a combination of elemental analyzer - isotope ratio mass spectrometry and liquid chromatography - isotope ratio mass spectrometry (δ 13C-EA/LC-IRMS). Apidologie 2008; 39(5): 574-587.
[7] Cotte JF., Casabianca H., Chardon S., Heritier JL., Grenier-Loustalot MF. Application of carbohydrate analysis to verify honey authenticity. J. Chromatogr. A 2003; 1021, 145-155.
[8] Gok S., Severcan M., Goormaghtigh E., Kandemir I., Severcan F. Differentiation of Anatolian honey samples from different botanical origins by ATR-FTIR spectroscopy using multivariate analysis, Food Chemistry 2015; 170, 234-240.
[9] Ruiz-Matute AI., Soria AC., Martinez-Castro I., Sanz ML. New methodology based on GCMS to detect honey adulteration with commercial syrups, J. Agric. Food Chemistry 2007; 55, 7264-7269.
[10] Sivakesava S., Irudarayaj J. Classification of simple and complex sugar adulterants in honey by mid-infrared spectroscopy, Int. J. Food Sci. Technology 2002; 37, 351-360.
[11] Cordella C., Antinelli JF., Aurıeres C., Faucon JP., Carbol-Bass DC., Sbırrazzuoli N. Use of differential scanning calorimetry (DSC) as a new technique for detection of adulteration in honeys. 1. Study of adulteration effect on honey thermal behavior, J. Agric. Food Chemistry 2002; 50, 203-208.
[12] Morales V., Corzo N., Sanz ML. HPAECPAD oligosaccharide analysis to detect adulterations of honey with sugar syrups, Food Chemistry 2008; 107, 922-928.
[13] Li S., Shan Y., Zhu X., Zhang X., Ling G. Detection of honey adulteration by high fructose corn syrup and maltose syrup using Raman spectroscopy, J. Food Compos. Anal 2012; 28, 69-74.
[14] Bertelli D., Lolli M., Papotti G., Bortolotti L., Serra G., Plessi M. Detection of honey adulteration by sugar syrups using onedimensional and 461 two-dimensional highresolution nuclear magnetic resonance, J. Agric. Food Chemistry 2010; 58, 8495-8501.
[15] Cinar SB., Eksi A., Coskun İ. Carbon isotope ratio (13C/12C) of pine honey and detection of HFCS adulteration, Food Chemistry 2014, 157, 10-13.
[16] Guler A., Kocaokutgen H., Garipoglu AV., Onder H., Ekinci D., Biyik S. Detection of adulterated honey produced by honeybee (Apis mellifera L.) colonies fed with different levels of commercial industrial sugar (C3 and C4 plants) syrups by the carbon isotope ratio analysis, Food Chemistry 2014; 155, 155-160.
[17] Rogers KM., Sim M., Stewart S., Phillips A., Cooper J., Douance C., Pyne R., Rogers P. Investigating C-4 sugar contamination of Manuka honey and other New Zealand honey varieties using carbon isotopes, J. Agric. Food Chemistry 2014, 62, 2605-2614.
[18] Turkmen I., EKSI A. Gıda analitiğinde izotopik yöntemler. Dünya Gıda 2010; 11, 68- 74.
[19] Kacar B. Bitki Fizyolojisi. A.Ü.Z.F. Toprak Bölümü, Yayın No:1447, Ders kitabı:427, Ankara, 1996.
[20] Çelik N. Ürün Fizyolojisi, Uludağ Üniversitesi Ders Notları, No:79, Bursa, 1998.
[21] Aydemir, O., İnce, F. Bitki Besleme, 653 s, Diyarbakır, 1988.
[22] Türk M., Çelik N. CO2 Özümlemesinde C-3 ve C-4 Tipi Bitkilerde Fotosentez-Solunum Denge Noktalarının Belirlenmesi. Süleyman Demirel Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü Dergisi 2006; 10-1,48-51.
[23] Osmond CB. Crassulacean acid metabolism: A curiosity in context. Ann.Rev. Plant Physiol 1978; 29, 379-414.
[24] Pissinatto L., Martinelli LA., Victoria RL., de Camargo PB. Stable carbon isotopic analysis and the botanical origin of ethanol in Brazilian brandies, Food Research International 1999; 32, 665 -668.
[25] Padovan GJ ., Rodriques LP ., Leme IA., Jong D D ., Marchini, JS. Presence of C4 sugars in honey samples detected by the carbon isotope ratio measured by IRMS, Eurasion Journal of Analytical Chemistry 2007; 2(3): 134 -141.
[26] Padovan GJ ., De Jong D ., Rodrigues LP ., Marchini JS. Detection of adulteration of commercial honey samples by the 13C/12C isotopic ratio, Food Chemistry 2003; 82(4): 633 -636.
[27] Çınar, S. Türk çam balının analitik özellikleri. Doktora tezi. Ankara Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü Gıda Mühendisliği Bölümü. 90s., 2010.
[28] White JW ., Winters K. Honey protein as internal standard for stable carbon issotope ratio detection of adulteration of honey, Journal of the Association of Official Analytical Chemists 1987; 72, 907 -911.
[29] Cengiz MF ., Durak MZ ., Ozturk M. In -house validation for the determination of honey adulteration with plant sugars (C4) by Isotope Ratio Mass Spectrometry (IR -MS), LWT - Food Science and Technology 2014; 57(1): 9 - 15.
[30] Tosun M. Detection of adulteration in honey samples added various sugar syrups with 13C/12C isotope ratio analysis method, Food Chemistry 2013; 138, 1629 -1632.
[31] Dong H ., Luo D ., Xian Y ., Luo H ., Guo X ., Li C ., and Zhao M. Adulteration ıdentification of commercial honeys with C -4 sugar content of negative values by elemental analyzer (ea) and Liquid Chromatography (LC) coupled to an ısotope ratio mass spectrometer (IRMS), J. Agric. Food Chemistry 2016; 64, 16, 3258 - 3265.

APA	Türkmen Özen İ (2020). Balda Hile Tespitinde İzotopik Analiz Uygulamaları. , 207 - 212.
Chicago	Türkmen Özen İlkay Balda Hile Tespitinde İzotopik Analiz Uygulamaları. (2020): 207 - 212.
MLA	Türkmen Özen İlkay Balda Hile Tespitinde İzotopik Analiz Uygulamaları. , 2020, ss.207 - 212.
AMA	Türkmen Özen İ Balda Hile Tespitinde İzotopik Analiz Uygulamaları. . 2020; 207 - 212.
Vancouver	Türkmen Özen İ Balda Hile Tespitinde İzotopik Analiz Uygulamaları. . 2020; 207 - 212.
IEEE	Türkmen Özen İ "Balda Hile Tespitinde İzotopik Analiz Uygulamaları." , ss.207 - 212, 2020.
ISNAD	Türkmen Özen, İlkay. "Balda Hile Tespitinde İzotopik Analiz Uygulamaları". (2020), 207-212.

APA	Türkmen Özen İ (2020). Balda Hile Tespitinde İzotopik Analiz Uygulamaları. Osmaniye Korkut Ata Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü Dergisi (Online), 3(2), 207 - 212.
Chicago	Türkmen Özen İlkay Balda Hile Tespitinde İzotopik Analiz Uygulamaları. Osmaniye Korkut Ata Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü Dergisi (Online) 3, no.2 (2020): 207 - 212.
MLA	Türkmen Özen İlkay Balda Hile Tespitinde İzotopik Analiz Uygulamaları. Osmaniye Korkut Ata Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü Dergisi (Online), vol.3, no.2, 2020, ss.207 - 212.
AMA	Türkmen Özen İ Balda Hile Tespitinde İzotopik Analiz Uygulamaları. Osmaniye Korkut Ata Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü Dergisi (Online). 2020; 3(2): 207 - 212.
Vancouver	Türkmen Özen İ Balda Hile Tespitinde İzotopik Analiz Uygulamaları. Osmaniye Korkut Ata Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü Dergisi (Online). 2020; 3(2): 207 - 212.
IEEE	Türkmen Özen İ "Balda Hile Tespitinde İzotopik Analiz Uygulamaları." Osmaniye Korkut Ata Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü Dergisi (Online), 3, ss.207 - 212, 2020.
ISNAD	Türkmen Özen, İlkay. "Balda Hile Tespitinde İzotopik Analiz Uygulamaları". Osmaniye Korkut Ata Üniversitesi Fen Bilimleri Enstitüsü Dergisi (Online) 3/2 (2020), 207-212.