Hakan SAĞSÖZ
(Dicle Üniversitesi, Veteriner Fakültesi, Histoloji ve Embriyoloji Anabilim Dalı, Diyarbakır, Türkiye)
UĞUR TOPALOĞLU
(Dicle Üniversitesi, Veteriner Fakültesi, Histoloji ve Embriyoloji Anabilim Dalı, Diyarbakır, Türkiye)
BERNA GÜNEY SARUHAN
(Dicle Üniversitesi, Veteriner Fakültesi, Histoloji ve Embriyoloji Anabilim Dalı, Diyarbakır, Türkiye)
M. Erdem AKBALIK
(Dicle Üniversitesi, Veteriner Fakültesi, Histoloji ve Embriyoloji Anabilim Dalı, Diyarbakır, Türkiye)
M. Aydın KETANİ
(Dicle Üniversitesi, Veteriner Fakültesi, Histoloji ve Embriyoloji Anabilim Dalı, Diyarbakır, Türkiye)
SEMİH ALTAN
(Dicle Üniversitesi, Veteriner Fakültesi, Cerrahi Anabilim Dalı, Diyarbakır, Türkiye)
ZEKİ OĞURTAN
(Selçuk Üniversitesi, Veteriner Fakültesi, Cerrahi Anabilim Dalı, Konya, Türkiye)
Yıl: 2018Cilt: 11Sayı: 1ISSN: 1307-9972 / 1308-0679Sayfa Aralığı: 22 - 28Türkçe

188 0
Tavşanlarda Asidik Korneal Yanıklarda CD8 ve CD68 Pozitif Hücrelerin Dağılımı
Asitler genel olarak alkali maddelere göre daha az zararlıdır. Temas ettikleri dokularda proteinleri denatüre ederek ve çökerterek hasaraneden olurlar. Pıhtılaşmış proteinler de, asidin daha fazla nüfuz etmesini önlemek için bariyer görevi görür. İstisnai bir durum olarak,hidroflorik asitdeki (HFA) floroid iyonlar korneanın derin katmanlarına nüfus eder ve belirgin ön segment yıkımına neden olur. HFA,zaman zaman korneal kök hücre eksikliklerine yol açarak oküler yüzeyde ciddi kronik yangılara neden olabilir. Bu çalışmanın amacı,tavşanlarda HFA ile yakılan korneada CD8 ve CD68 pozitif hücrelerin lokalizasyonunu ve dağılımını incelemektir. Bu amaçla 72 erkekYeni Zelanda tavşanı kullanıldı. Genel anestezi altında, HFA ile korneal yanık oluşturulduktan sonra dimetil sülfoksit (DMSO),indometazin ve DMSO + indometazin ilaçları ile tedavi uygulandı. Hayvanlar, uygulamaların 2., 7. ve 14. günlerinde ötenazi edildi veher bir kornea % 10 nötral formol solüsyonunda tespit edildi. CD8 ve CD68 ekspresyonu açısından kontrol, DMSO ve DMSO +indometazin grupları arasında fark yoktu. Ancak, uygulama günleri arasında farklılıklar vardı. Deneylerin 2. ve 7. günlerinde, kornealstromadaki CD8 ve CD68pozitif hücrelerin sayısı artmıştı. Yangı 14. günde azaldığı için indometazin grubu hariç tüm gruplarda CD8 veCD68pozitif hücrelerin sayısı azalmıştı. Sonuç olarak, bizim bulgularımız gruplar arasında farklılığın olmadığını, CD8 ile CD68 pozitifhücrelerin yangının dönemlerine göre arttığını göstermiştir.
Fen > Mühendislik > Hücre ve Doku Mühendisliği
Fen > Tıp > Hücre Biyolojisi
Fen > Tıp > Genel ve Dahili Tıp
DergiAraştırma MakalesiErişime Açık
  • Kılıç Müftüoglu I, Aydın Akova Y, Çetinkaya A. (2015). Korneal Yanıklarda Klinik ve Tedavi Yaklaşımımız. Turk J Ophthalmol. DOI: 10.4274 /tjo.9926
  • Tuft SJ, Shortt AJ. (2009). Surgical Rehabilitation Following Severe Ocular Burns. Eye 23: 1966–1971.
  • Fish R, Davidson RS. (2010). Management of Ocular Thermal and Chemical Injuries, Including Amniotic Membrane Therapy. Curr Opin Ophthalmol. 21(4):317- 321.
  • Altan S, Ogurtan Z. (2017). Dimethyl Sulfoxide but not Indomethacin is Efficient for Healing of Hydrofluoric Acid Eye Burn. Burns. 43(1):232-244.
  • Altan S, Sağsöz H, Oğurtan Z. (2017). Topical Dimethyl Sulfoxide Inhibits Corneal Neovascularization and Stimulates Corneal Repair in Rabbits Following Acid Burn. Biotec Histochem. 92(8): 619-636.
  • Kim JW, Jeong H, Yang MS, Lim CW, Kim B. (2017). Therapeutic Effects of Zerumbone in an Alkali-Burned Corneal Wound Healing Model. Int Immunopharmacol. 48: 126-134.
  • Güney Saruhan B, Akbalık ME, Topaloğlu U ve ark. (2017). Tavşanlarda Hidroflorik Asit ile Oluşturulan Yanık Sonrası, DMSO ve İndometazinin Korneal Mast Hücreleri Üzerine Etkilerinin Araştırılması. Dicle Üniv Vet Fak Derg. 10(2):130-137.
  • Chistiakov DA, Killingsworth MC, Myasoedova VA, Orekhov AN, Bobryshev YV. (2017). CD68/Macrosialin: Not Just a Histochemical Marker. Lab Invest. 97: 4-13.
  • Gottfried E, Kunz-Schughart LA, Weber A, et al. (2008). Expression of CD68 in Non-Myeloid Cell Types. Scand J Immunol. 67: 453-463.
  • Rehg JE, Bush D, Ward JM. (2012). The Utility of Immunohistochemistry for the Identification of Hematopoietic and Lymphoid Cells in Normal Tissues and Interpretation of Proliferative and Inflammatory Lesions of Mice and Rats. Toxicol Pathol. 40(2): 345-374.
  • Amano S, Rohan R, Kuroki M, Tolentino M, Adamis AP. (1998). Requirement for Vascular Endothelial Growth Factor in Wound-and Inflammation-Related Corneal Neovascularization. Invest Ophthalmol Vis Sci. 39(1): 18- 22.
  • Balicki I. (2012). Clinical Study on the Application of Tacrolimus and DMSO in the Treatment of Chronic Superficial Keratitis in Dogs. Pol J Vet Sci. 15(4): 667- 676.
  • Bock F, Onderka J, Dietrich T, et al. (2007). Bevacizumab as Apotent Inhibitor of Inflammatory Corneal Angiogenesis and Lymph Angiogenesis. Invest Ophthalmol Vis Sci. 48(6): 2545-2552.
  • Atley K, Ridyard E. (2015). Treatment of Hydrofluoric Acid Exposure to the Eye. Int J Ophthalmol. 8: 157-161.
  • Wagoner MD. (1997). Chemical Injuries of the Eye: Current Concepts in Pathophysiology and Therapy. Surv Ophthalmol. 41(4):275-313.
  • Prabhat KP, Sanaz AL. (2007). Ocular Emergencies. Am Fam Physician. 76(6): 829-836. 17. Laria C, Alio JL, Ruiz-Moreno JM. (1997). Combined Non-Steroidal Therapy in Experimental Corneal Injury. Ophthalmic Res. 29(3):145-53.
  • Saito T, Nishida K, Sugiyama H, et al. (2008). Abnormal Keratocytes and Stromal Inflammation in Chronic Phase of Severe Ocular Surface Diseases with Stem Cell Deficiency. Br J Ophthalmol. 92(3):404-410.
  • Beiran I, Miller B, Bentur Y. (1997). The Efficacy of Calcium Gluconate in Ocular Hydrofluoric Acid Burns. Hum & Exp Toxicol. 16(4):223-228.
  • Gordon DM, Kleberger KE. (1968). The effect of Dimethylsulfoxide (DMSO) on Animal and Human Eyes. Arch Ophthal. (4):423-427.
  • Kuffova L, Holan V, Lumsden L, Forrester JV, Filipec M. (1999). Cell Subpopulations in Failed Human Corneal Grafts. Br J Ophthalmol. 83: 1364-1369.

TÜBİTAK ULAKBİM Ulusal Akademik Ağ ve Bilgi Merkezi Cahit Arf Bilgi Merkezi © 2019 Tüm Hakları Saklıdır.